Objectifs microscope composé : Comparatif 4×, 10×, 20×, 40×, 100×

Les microscopes composés ont généralement une tourelle de 4–5 objectifs. Chaque grossissement sert un but distinct. Voici une comparaison pratique.

Objectif	Grossissement total (oculaire 10×)	NA (typique)	Distance de travail	Usage principal	Immersion ?
4× (Balayage)	40×	0,10–0,13	~18–30 mm	Vue d'ensemble, localisation échantillon, grandes structures (insectes entiers, sections plantes)	Non
10× (Faible puissance)	100×	0,25–0,30	~4–10 mm	Histologie générale, architecture tissulaire, dépistage parasites	Non
20×	200×	0,40–0,50	~1–3 mm	Histologie détaillée, cytologie, petits détails tissulaires	Non
40× (Fort à sec)	400×	0,60–0,75	~0,4–0,6 mm	Détail cellulaire, bactéries, champignons, frottis sanguins	Non
100× (Immersion huile)	1000×	1,25–1,40	~0,1–0,2 mm	Résolution max : morphologie bactéries, structures intracellulaires, parasites paludisme	Oui – huile immersion

Concepts clés

Ouverture numérique (NA) détermine pouvoir de résolution : Résolution = 0,61 λ / NA. NA plus élevé = détails plus fins.
Distance de travail diminue quand grossissement augmente — risque de heurter la lame.
Immersion huile (100×) adapte indice réfraction verre (1,515) pour éliminer réfraction air-verre, maximisant NA.
Parfocalité : Objectifs de qualité restent près du point focal en tournant la tourelle ; seul le réglage fin nécessaire.

Contraste de phase (10×, 20×, 40×, 100×) — Cellules vivantes non colorées.
Fluorescence (Plan Fluor, Plan Apochromat) — Haute transmission, correction UV.
Longue distance de travail (LWD) — Pour flacons/boîtes culture tissulaire (microscopes inversés).
60× / 25× — Grossissements intermédiaires pour applications spécifiques.

Commencez à 4× ou 10× pour trouver zone d'intérêt.
Montez à 40× pour détail.
Utilisez 100× huile seulement si nécessaire ; nettoyez huile immédiatement après.

Adaptez l'objectif à la question — ne montez pas juste à 1000×.