Techniques de préparation de lames pour microscope

Le microscope ouvre sur un monde cellulaire fascinant. Les lames peuvent se conserver longtemps, permettant d'observer la dégradation cellulaire long terme. Que ce soit pour un examen rapide ou une étude longue, la préparation de la lame est fondamentale. Ces techniques garantissent une lame parfaite à chaque fois.

Lame à montage à sec

Pour spécimens ne nécessitant pas d'eau. Lame propre. Déposez l'échantillon le plus fin possible au centre. Couvrez avec lamelle. Si gants en caoutchouc : appuyez doucement pour aplatir et faire adhérer.

Lame à montage humide

Pour spécimens vivant dans l'eau (monocellulaires, spécimens vivants). Lame propre. 1-2 gouttes d'eau distillée au centre (pipette). Placez l'échantillon dans l'eau. Couvrez. Gants = appui sûr. Doigts nus = empreintes = gêne observation.

L'aspiration naturelle maintient la lamelle, permettant conservation longue. Si micro-organismes trop mobiles : ajoutez une goutte de Protoslo ou solution ralentissante.

Coloration des spécimens

Certains spécimens sont peu visibles et nécessitent une coloration. Méthode idéale : ajoutez une goutte d'iode de Lugol dans l'eau avant l'échantillon. Alternatives : « violet de cristal » ou « bleu de méthylène » (marque Lugol).

Astuce pour colorer après pose de la lamelle : déposez le colorant sur un bord de la lamelle, appliquez un papier absorbant sur le bord opposé. En absorbant l'humidité, le papier aspire le colorant par capillarité à travers l'échantillon.